一、什么是瓊脂糖凝膠

瓊脂糖凝膠是以瓊脂糖為支持介質(zhì)制備的凝膠。瓊脂糖分為一般瓊脂糖和經(jīng)化學修飾后熔點降低的低熔點瓊脂糖，瓊脂糖的熔點在62?65°C之間，融化后在37°C下可維持液態(tài)數(shù)小時，30°C時凝固成膠。多用于對染色體DNA在凝膠內(nèi)進行原位酶切及DNA片段回收。瓊脂糖凝膠 由于孔徑大常用于大分子蛋白質(zhì)、DNA的分離。

二、瓊脂糖凝膠用途

瓊脂糖凝膠可以用于生化、醫(yī)學研究領(lǐng)域。在生化上可作為凝膠電泳的支持物和親和層析的載體，在醫(yī)學上還可用于研究病毒嗜菌體、細菌、臨床檢驗、生化分析、蛋白質(zhì)、核酸、抗原、抗體，以及多糖的分離、提純及藥物的制備。

做一個完美的瓊脂糖凝膠圖，緩沖液的選擇很重要。

三、如何選擇合適的緩沖液

最常用的緩沖液是TAE緩沖液和TBE緩沖液。一般來說，實驗室通常選擇這兩者中的其中一種緩沖液，所以了解兩個緩沖液之間的區(qū)別對您的實驗是非常重要的，那么如何區(qū)分這兩個緩沖液呢：

1.TAE是Tris-乙酸，緩沖容量小，但是溶解度大，易于儲存；TBE是Tris-硼酸，緩沖容量大，但是溶解度小，不易長期儲存，易產(chǎn)生沉淀。

2.TAE適合較大的DNA片段，而TBE適合較小的DNA片段。

3.如果凝膠運行時間長，建議使用TBE。如果您計劃將DNA用于任何下游應用，則建議您使用TBE。

4.TAE易于儲存，更加穩(wěn)定，而TBE幾周內(nèi)會出現(xiàn)沉淀。

四、新鮮的緩沖液

選擇好緩沖液后，準備一份從未使用過的緩沖，新鮮的小份緩沖液，可以儲存5倍或10倍的緩沖液等，但使用前一定要稀釋。使用新鮮的緩沖液，用于制備凝膠.實驗結(jié)果會變得更清晰，條帶更均勻。

五、緩沖液的溫度把控

正所謂慢工出細活，制作活瓊脂糖凝膠一定要有耐心。凝膠運行電泳電壓應在75V以下，緩沖液不要過熱。緩沖液的溫度是是造成條帶不清晰、不均勻的主要原因之一。為了防止緩沖液出現(xiàn)過熱的情況，在運行前，可以將緩沖液或凝膠冷卻，或在冷藏室運行凝膠。

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